對于大部分abcam抗體，比較合適的保存方式是分裝后保存在 -20℃ or-80℃ 。對絕大多數抗體來說，保存在-20℃是*足夠了。沒有任何證據顯示保存在-80℃會有更多的好處!
分裝可以zui大程度的降低反復凍融對抗體活性的損害，同時也降低了由于多次從同一管中吸取抗體造成的污染可能性。分裝的量以一次實驗用完為好，zui少不能少于10ul每份。因為分裝體積越小，抗體的濃度越可能會受到蒸發以及管壁吸附的影響。
復融后的分裝抗體如果一次用不完，將剩余母液保存在4℃，避免再凍起來!抗體工作液應該當天配制當天用完，在4℃ 盡量不要超過1天。避免將abcam抗體保存在自動除霜冰箱中。盡量將抗體保存在冰箱里層，而不是門上。
關于abcam抗體加入一些試劑或其他溶劑的介紹。
關于加入甘油保存：
有些人會加50%的甘油到abcam抗體中來避免反復凍融，甘油在-20℃會降低冰點。這對很多抗體可能是可行的。但是abcam僅對非常小的一部分抗體檢測過其在這種條件下的穩定性;而Abcam只對按照推薦條件保存的抗體提供質量保證!加入甘油的溶液不建議在-80℃保存，因為這已經超過了甘油的冰點。如果您要加入甘油來保存抗體的話，請謹慎注意無菌操作，避免污染!
關于蛋白保護劑：
蛋白在高濃度時更不容易降解(1mg/ml或者更高)，這就是為什么在abcam抗體中加入BSA之類作為穩定劑的原因了;另一方面，加入的蛋白也可以減少抗體由于管壁吸附所造成的損失。但是如果抗體要用來標記的話，則不能加入蛋白穩定劑，因為這些穩定劑會和抗體一起競爭結合標記物。
關于*(sodiumazide)的使用：
為了防止微生物污染，*經常被加入到抗體中(終濃度0.02%(w/v))。很多abcam抗體已經含有了0.02%-0.05%的*，在說明書的“Storage buffer”中有標明的。
在下述情況中不能使用*：
如果抗體用于染色或處理活細胞，用于體內研究。*在抵抗微生物的同時，對其它大部分有機物也是有毒的，因為它阻斷了線粒體的cytochromeelectron transport system。
要偶聯帶有氨基基團的抗體：*會干擾任何含有氨基基團的偶聯，因此在進行偶聯之前，應將*去除。偶聯后的抗體可以加入*保存，但是濃度只能是0.01%。對于需要偶聯的抗體，thimerosal(merthiolate)可以替代*作為保護劑!
注意：*的去除方式，可以通過凝膠電泳或過濾的方式去除!IgG的分子量是150kDa(IgM 是~ 600kDa); *的分子量只有65Da。使用cut off 14kDa的濾膜即可將*從抗體中去除。
abcam抗體如何保存是有講究的，希望以上內容可以給大家一些參考。
